Pipety Pasteura

Pipety Pasteura do pobierania, przenoszenia i dozowania cieczy

Pipety Pasteura, określane również jako pipety transferowe lub zakraplacze laboratoryjne, służą do szybkiego pobierania, przenoszenia i dozowania niewielkich ilości cieczy. Są wykorzystywane podczas przygotowywania próbek, nanoszenia kropli, rozdzielania faz, pobierania supernatantu oraz dodawania odczynników pomocniczych.

Oferta BestLabs obejmuje sterylne i niesterylne pipety Pasteura z tworzywa LDPE o objętości nominalnej od 1 do 10 ml, a także szklane pipety Pasteura wykonane ze szkła sodowo-wapniowego lub borokrzemianowego. Dostępne warianty różnią się materiałem, pojemnością, długością, sposobem pakowania, obecnością podziałki oraz przeznaczeniem.

Pipeta Pasteura nie jest pipetą miarową. Podziałka umieszczona na pipetach transferowych służy przede wszystkim do orientacyjnej kontroli objętości. Jeżeli metoda wymaga dokładnego i powtarzalnego odmierzania cieczy, należy zastosować skalibrowaną pipetę automatyczną, pipetę serologiczną albo inne odpowiednie wyposażenie wolumetryczne.

Do czego służy pipeta Pasteura?

Pipeta Pasteura umożliwia wytworzenie niewielkiego podciśnienia, zassanie cieczy i jej kontrolowane uwolnienie. W jednoczęściowych pipetach z tworzywa funkcję elementu ssącego pełni zintegrowana bańka. Pipety szklane wymagają zastosowania zgodnej gruszki gumowej lub pipetora.

Pipety transferowe są stosowane między innymi do:

• przenoszenia cieczy pomiędzy probówkami, płytkami, kolbami i innymi naczyniami,
• dodawania odczynników pomocniczych do mieszanin reakcyjnych,
• nanoszenia zawiesin i roztworów na szkiełka mikroskopowe,
• pobierania supernatantu znad osadu,
• rozdzielania widocznych warstw cieczy,
• przygotowywania orientacyjnych rozcieńczeń roboczych,
• dozowania kroplowego podczas testów pomocniczych,
• przenoszenia materiału biologicznego i próbek środowiskowych,
• uzupełniania niewielkich naczyń i zagłębień płytek,
• prac rutynowych w mikrobiologii, analityce i kontroli jakości.

Ze względu na brak klasy dokładności pipet Pasteura nie należy stosować do przygotowywania wzorców, roztworów mianowanych, krzywych kalibracyjnych ani innych procedur, w których wynik zależy od dokładnie odmierzonej objętości.

Pipety Pasteura z tworzywa i pipety szklane

Materiał należy dobierać do konkretnej substancji. LDPE nie jest odporny na wszystkie rozpuszczalniki i odczynniki, natomiast szkło również nie jest materiałem uniwersalnym. Przed pracą z kwasami, zasadami, rozpuszczalnikami organicznymi lub mieszaninami agresywnymi trzeba sprawdzić zgodność chemiczną dla konkretnego produktu, stężenia, temperatury i czasu kontaktu.

Porównanie pipet Pasteura w ofercie BestLabs

Parametry oraz sposób pakowania należy każdorazowo potwierdzić na karcie wybranego produktu. Sterylność, materiał i pojemność nominalna nie przesądzają o przydatności pipety do konkretnej procedury.

Sterylne i niesterylne pipety Pasteura

Sterylne pipety transferowe

Sterylne pipety Pasteura są przeznaczone do czynności, w których wprowadzenie dodatkowych drobnoustrojów mogłoby wpłynąć na próbkę, hodowlę albo wynik badania. Indywidualne pakowanie pozwala otworzyć pojedynczą pipetę bez naruszania pozostałych sztuk.

Wariant sterylny warto wybrać między innymi do:

• przenoszenia jałowych pożywek i roztworów,
• pracy z hodowlami mikroorganizmów i komórek,
• przygotowywania próbek mikrobiologicznych,
• dozowania odczynników do sterylnych naczyń,
• procedur opisanych w SOP jako wymagające materiałów sterylnych.

Sterylność nie oznacza automatycznie braku DNaz, RNaz, endotoksyn, pirogenów ani substancji cytotoksycznych. Jeżeli procedura wymaga któregokolwiek z tych parametrów, musi on zostać oddzielnie potwierdzony w dokumentacji konkretnego wyrobu.

Niesterylne pipety Pasteura

Niesterylne pipety transferowe są ekonomicznym rozwiązaniem do rutynowych zadań, w których jałowość nie jest wymagana. Mogą być stosowane podczas przygotowywania odczynników pomocniczych, przenoszenia roztworów technicznych, dozowania barwników oraz wykonywania prac niewpływających na czystość mikrobiologiczną próbki.

Niesterylnej pipety nie należy traktować jako sterylnej tylko dlatego, że pochodzi z nowego opakowania. Ewentualny sposób przygotowania wyrobu przed użyciem musi być zgodny z materiałem pipety, dokumentacją producenta i zwalidowaną procedurą laboratorium.

Jak dobrać pojemność pipety transferowej?

Pipety Pasteura 1 ml

Pipety 1 ml są przeznaczone do małych ilości cieczy oraz pracy w niewielkich probówkach, mikronaczyniach i zagłębieniach płytek. Mała bańka może ułatwiać stopniowe dozowanie, ale nie zastępuje mikropipety w procedurach wymagających dokładności w zakresie mikrolitrowym.

Pipety Pasteura 3 ml

Pipety 3 ml są najbardziej uniwersalnym wariantem do codziennej pracy. Mogą służyć do pobierania supernatantu, przenoszenia zawiesin, przepłukiwania niewielkich naczyń oraz dodawania odczynników w porcjach lub kroplami.

Pipety Pasteura JUMBO 10 ml

Pipety JUMBO 10 ml są przeznaczone do szybkiego transferu większej ilości cieczy. Sprawdzają się przy przenoszeniu roztworów pomiędzy większymi naczyniami, przygotowywaniu próbek i pobieraniu cieczy z pojemników o podwyższonym rancie. Wariant dostępny w BestLabs nie posiada podziałki, dlatego jest przeznaczony do transferu, a nie odmierzania objętości.

Podczas wyboru należy uwzględnić również długość pipety, średnicę końcówki, lepkość cieczy, głębokość naczynia i wymaganą kontrolę szybkości dozowania.

Podziałka na pipecie Pasteura a dokładność pomiaru

Wytłoczona podziałka pomaga oszacować ilość pobranej lub uwalnianej cieczy. Nie oznacza jednak, że pipeta została skalibrowana jako laboratoryjny przyrząd wolumetryczny.

Na rzeczywistą ilość przeniesionej cieczy wpływają między innymi:

• siła i sposób ściśnięcia bańki,
• kąt trzymania pipety,
• głębokość zanurzenia końcówki,
• lepkość, gęstość i napięcie powierzchniowe cieczy,
• temperatura próbki,
• obecność pęcherzyków powietrza,
• czas opróżniania i ilość cieczy pozostającej na ściankach,
• różnice pomiędzy operatorami.

Jeżeli objętość jest parametrem krytycznym dla wyniku, należy użyć pipety automatycznej z odpowiednią końcówką, pipety serologicznej albo skalibrowanego naczynia miarowego.

Jak prawidłowo używać plastikowej pipety Pasteura?

1. Sprawdź nazwę produktu, pojemność, sterylność, termin ważności i stan opakowania.
2. Otwórz opakowanie w sposób ograniczający kontakt końcówki z rękami i otoczeniem.
3. Ściśnij bańkę przed zanurzeniem końcówki w cieczy.
4. Zanurz końcówkę tylko na głębokość konieczną do pobrania próbki.
5. Powoli zwolnij nacisk, unikając zasysania cieczy do całej bańki.
6. Przenieś pipetę nad naczynie docelowe, utrzymując ją w pozycji ograniczającej wyciek.
7. Delikatnie ściśnij bańkę i uwolnij wymaganą orientacyjnie ilość cieczy.
8. Nie dotykaj końcówką powierzchni, które mogą zanieczyścić próbkę lub odczynnik.
9. Po użyciu umieść pipetę w odpowiednim pojemniku na odpady.

Nie należy wielokrotnie zasysać i gwałtownie wypuszczać cieczy, jeżeli może to powodować pienienie, powstawanie aerozolu lub uszkodzenie komórek. Lepkie ciecze należy pobierać i uwalniać wolniej, uwzględniając ich pozostawanie na ściankach.

Bezpieczne używanie szklanych pipet Pasteura

Szklana pipeta Pasteura wymaga zastosowania zgodnej gruszki lub mechanicznego pipetora. Pipetowanie ustami jest niedopuszczalne niezależnie od rodzaju przenoszonej substancji.

• Przed użyciem sprawdź pipetę pod kątem pęknięć, wyszczerbień i uszkodzenia końcówki.
• Dobierz gruszkę pasującą do średnicy zewnętrznej pipety.
• Nie wciskaj szkła do gruszki z nadmierną siłą.
• Podczas montażu trzymaj pipetę możliwie blisko miejsca połączenia.
• Nie używaj pipety, która została upuszczona lub uderzona.
• Nie kieruj końcówki w stronę użytkownika ani innych osób.
• Zużyte lub uszkodzone pipety usuwaj do pojemnika odpornego na przekłucie.

Nie należy zakładać możliwości autoklawowania, ponownego użycia ani ogrzewania pipety wyłącznie na podstawie rodzaju szkła. Postępowanie musi być zgodne z deklaracją producenta dla konkretnego numeru katalogowego.

Ograniczanie kontaminacji krzyżowej

Jednorazowa konstrukcja pipet ułatwia ograniczenie przenoszenia materiału pomiędzy próbkami, ale sama w sobie nie eliminuje ryzyka kontaminacji. Dobra praktyka laboratoryjna obejmuje:

• stosowanie nowej pipety dla każdej próbki, szczepu lub odczynnika,
• nieodkładanie użytej pipety na blat roboczy,
• unikanie dotykania końcówki do szyjki butelki i ścianek naczynia,
• niezanurzanie zanieczyszczonej pipety ponownie w opakowaniu źródłowym odczynnika,
• ograniczenie tworzenia aerozolu i rozprysku,
• pracę w odpowiedniej komorze bezpieczeństwa biologicznego, jeżeli wymaga tego ocena ryzyka,
• dezynfekcję stanowiska przed rozpoczęciem i po zakończeniu procedury,
• stosowanie rękawic i pozostałych wymaganych środków ochrony indywidualnej.

Przy pracy z próbkami zakaźnymi, materiałem klinicznym lub hodowlami drobnoustrojów sposób postępowania powinien wynikać z oceny ryzyka biologicznego i zatwierdzonej instrukcji laboratorium.

Przechowywanie pipet sterylnych

Pipety należy przechowywać w oryginalnym opakowaniu, w suchym i czystym miejscu, z dala od źródeł ciepła, wilgoci, bezpośredniego promieniowania słonecznego i substancji mogących uszkodzić materiał.

• Nie używaj sterylnej pipety z rozerwanym, mokrym lub otwartym opakowaniem.
• Kontroluj termin ważności sterylności wskazany przez producenta.
• Nie przechowuj opakowań bezpośrednio na podłodze ani przy zlewie.
• Po otwarciu opakowania zbiorczego zabezpiecz pozostały materiał przed pyłem i wilgocią.
• Stosuj rotację zapasów zgodnie z zasadą pierwsze traci ważność - pierwsze wychodzi.
• W systemie jakości dokumentuj numer partii, jeżeli wymaga tego identyfikowalność procesu.

Uszkodzenie opakowania jednostkowego oznacza utratę zadeklarowanej bariery sterylnej. Nie należy przywracać takiego produktu do zapasu materiałów sterylnych.

Utylizacja zużytych pipet Pasteura

Sposób usuwania pipet zależy od materiału oraz rodzaju cieczy, z którą miały kontakt.

• Czyste pipety z tworzywa należy usuwać zgodnie z obowiązującym systemem segregacji odpadów laboratoryjnych.
• Pipety zanieczyszczone chemicznie należy traktować jako odpady właściwe dla zastosowanej substancji.
• Pipety po materiale biologicznym należy umieścić w pojemniku przeznaczonym na odpowiednią kategorię odpadów biologicznych.
• Pipety szklane należy usuwać do sztywnego pojemnika odpornego na przekłucie.
• Uszkodzone szkło należy zbierać mechanicznie, bez dotykania odłamków dłonią.

Nie należy wyrzucać zanieczyszczonych pipet do zwykłego kosza ani opróżniać pozostałości cieczy do kanalizacji bez potwierdzenia, że pozwalają na to obowiązujące procedury.

Pipety Pasteura w systemie GLP, GMP i ISO

W laboratoriach pracujących zgodnie z GLP, GMP, ISO i wewnętrznymi SOP dobór pipety powinien być powiązany z przeznaczeniem czynności i jej wpływem na wynik. Dokumentacja może obejmować:

• nazwę i numer katalogowy stosowanej pipety,
• producenta, numer partii i termin ważności,
• wymaganą sterylność i sposób pakowania,
• zgodność materiałową z przenoszoną cieczą,
• zasady otwierania, użytkowania i usuwania produktu,
• postępowanie w przypadku uszkodzenia opakowania,
• rozróżnienie pomiędzy transferem orientacyjnym a pomiarem objętości.

Pipety Pasteura nie wymagają rutynowej kalibracji, ponieważ nie są przyrządami miarowymi. Nie oznacza to jednak, że mogą zastępować kalibrowane wyposażenie w metodach, w których objętość wpływa na wynik oznaczenia.

Zastosowanie pipet Pasteura w laboratoriach i przemyśle

Pipety Pasteura i jednorazowe pipety transferowe są wykorzystywane w:

• laboratoriach mikrobiologicznych i biotechnologicznych,
• kontroli jakości żywności, napojów i pasz,
• laboratoriach przemysłu mleczarskiego i rybnego,
• badaniach wody i próbek środowiskowych,
• laboratoriach farmaceutycznych i kosmetycznych,
• pracowniach chemicznych i analitycznych,
• laboratoriach weterynaryjnych i diagnostycznych,
• placówkach badawczych i edukacyjnych,
• działach badawczo-rozwojowych,
• rutynowej kontroli surowców, półproduktów i wyrobów gotowych.

Przydatność produktu należy zawsze oceniać na podstawie rodzaju próbki, wymaganej czystości, dokładności procedury, zgodności chemicznej oraz zasad bezpieczeństwa.

Jak wybrać pipetę Pasteura?

Przed zamówieniem należy określić:

• rodzaj czynności - transfer, pobieranie supernatantu, dozowanie kroplowe lub orientacyjne odmierzanie,
• wymaganą sterylność oraz sposób pakowania pipet,
• pojemność nominalną - 1, 3 albo 10 ml,
• materiał - LDPE, szkło sodowo-wapniowe lub szkło borokrzemianowe,
• zgodność chemiczną z próbką i odczynnikami,
• długość pipety i dostęp do naczynia,
• obecność lub brak podziałki orientacyjnej,
• lepkość i skłonność cieczy do pienienia,
• wymaganą liczbę sztuk i częstotliwość zużycia,
• zasady identyfikowalności materiałów zużywalnych w laboratorium.

Jeżeli kluczowa jest dokładność objętości, pipeta Pasteura nie będzie właściwym wyborem. W takim przypadku należy dobrać pipetę automatyczną, serologiczną lub inne kalibrowane wyposażenie wolumetryczne.

Pomoc w doborze pipet Pasteura

Jeżeli wybór zależy od rodzaju próbki, sterylności, pojemności albo zgodności materiałowej, skontaktuj się z zespołem BestLabs. Specjalista pomoże porównać pipety Pasteura 1 ml, 3 ml i 10 ml, modele sterylne i niesterylne oraz pipety wykonane z LDPE i szkła.

Materiał, objętość nominalna, długość, sterylność, sposób pakowania i obecność podziałki różnią się pomiędzy produktami. Przed użyciem należy sprawdzić kartę wyrobu, zgodność chemiczną oraz wymagania stosowanej procedury laboratoryjnej.